Preview

Известия Национальной академии наук Беларуси. Серия медицинских наук

Расширенный поиск

Эксперыментальная мадэль для ацэнкі гатоўнасці ранавай паверхні да прыняцця скурных трансплантатаў

https://doi.org/10.29235/1814-6023-2021-18-3-340-350

Полный текст:

Аннотация

Мэтай даследавання, выкананага на 65 пацуках пароды Вістар, было распрацаваць новую мадэль, каб высветліць, у якой ступені кверцэтын і нанакомплекс кверцэтын-2-гідраксіпрапіл-β-цыкладэкстрын, нанесеныя на рану, уплываюць на прыжыўляльнасць скурных аўтатрансплантатаў. Трансплантаты атрымлівалі з вушных ракавін жывёл, а іх прыжыўляльнасць ацэньвалі па ступені інгібіравання кантракцыі раны. Паказана, што апошняя залежыць ад плошчы трансплантатаў і часу, праз які яны былі размешчаны на ранавай паверхні пасля яе стварэння. Выяўлена, што кверцэтын пагаршае, а кверцэтын-2-гiдраксiпрапiл-β-цыкладэкстрын не пагаршае здольнасць ранавай паверхні прымаць трансплантаты.

Об авторах

А. А. Бакуновіч
Інстытут біяхіміі біялагічна актыўных злучэнняў НАН Беларусі
Беларусь

Бакунович Алексей Алексеевич – мл. науч. сотрудник

БЛК, 50, 230030, г. Гродно



Ю. У. Ярашэнка
Інстытут біяхіміі біялагічна актыўных злучэнняў НАН Беларусі
Беларусь

Ерошенко Юлия Владимировна – мл. науч. сотрудник

БЛК, 50, 230030, г. Гродно



А. Ф. Радута
Інстытут біяхіміі біялагічна актыўных злучэнняў НАН Беларусі
Беларусь

Радута Елена Францевна – ст. науч. сотрудник

БЛК, 50, 230030, г. Гродно



Е. В. Конанаў
Гродзенскі дзяржаўны медыцынскі ўніверсітэт
Беларусь

Кононов Евгений Васильевич – ассистент

ул. Горького, 80, 230009, г. Гродно



В. У. Буко
Інстытут біяхіміі біялагічна актыўных злучэнняў НАН Беларусі
Беларусь

Буко Вячеслав Ульянович – д-р биол. наук, профессор, заведующий отделом

БЛК, 50, 230030, г. Гродно



А. А. Астроўскі
Інстытут біяхіміі біялагічна актыўных злучэнняў НАН Беларусі
Беларусь

Островский Александр Александрович – д-р мед. наук, профессор, вед. науч. сотрудник

БЛК, 50, 230030, г. Гродно



Список литературы

1. Falanga, V. Classifications for wound bed preparation and stimulation of chronic wounds / V. Falanga // Wound Repair and Regeneration. – 2000. – Vol. 8, N 5. – P. 347–352. https://doi.org/10.1111/j.1524-475X.2000.00347.x

2. Золтан, Я. Пересадка кожи : пер. с венг. / Я. Золтан. – Будапешт : Акад. наук Венгрии, 1984. – 304 с.

3. Максименя, Г. Г. Клинико-фармакологическая характеристика препаратов для обработки ран / Г. Г. Максименя // Воен. медицина. – 2014. – № 2. – С. 105–114.

4. Nurses’ and surgeons’ views and experiences of surgical wounds healing by secondary intention: a qualitative study / D. McCaughan [et al.] // J. Clin. Nursing. ‒ 2020. ‒ Vol. 29, N 13‒14. – P. 2557–2571. https://doi.org/10.1111/jocn.15279

5. Липатов, К. В. Значение аутотрансплантации расщепленной кожи в гнойной хирургии / К. В. Липатов, Е. А. Комарова // Трансплантология. – 2012. – Т. 1, № 1. – С. 5–9.

6. Об утверждении клинического протокола лечения глубоких ожогов кожи методом трансплантации [Электронный ресурс] : приказ М-ва здравоохр. Респ. Беларусь, 24 марта 2011 г., № 293 // Аналитическая правовая система Бизнес-Инфо. – Режим доступа: http://bii.by/tx.dll?d=226257. – Дата доступа: 22.07.2020.

7. Ambika, A. P. Wound healing activity of plants from the Convolvulaceae family. Advances in wound care / A. P. Ambika, S. N. Nair // Adv. Wound Care. ‒ 2019. ‒ Vol. 1, N 1. ‒ P. 28‒37. https://doi.org/10.1089/wound.2017.0781

8. Quercetin improves inflammation, oxidative stress, and impaired wound healing in atopic dermatitis model of human keratinocytes / B. Beken [et al.] // Adv. Wound Care. ‒ 2020. ‒ Vol. 33, N 2. ‒ P. 69‒79. https://doi.org/10.1089/ped.2019.1137

9. Doersch, K. M. The impact of Quercetin on wound healing relates to changes in αV and β1 integrin expression / K. M. Doersch, M. K. Newell-Rogers // Exp. Biol. Med. – 2017. – Vol. 242, N 14. – P. 1424–1431. https://doi.org/10.1177/1535370217712961

10. Nayak, S. B. Wound-healing potential of oil of Hypercium perforatum in excision wounds of male sprague dawley rats / S. B. Nayak, K. Isik, J. R. Marshall // Adv. Wound Care. – 2017. – Vol. 6, N 12. – P. 401–406. https://doi.org/10.1089/wound.2017.0746

11. Pereira, R. F. Traditional therapies for skin wound healing / R. F. Pereira, P. J. Bártolo // Adv. Wound Care. – 2016. – Vol. 5, N 5. – P. 208–229. https://doi.org/10.1089/wound.2013.0506

12. Ранозаживляющие и иммуномодулирующие свойство нанокомплекса кверцетина с гидроксипропил- β-циклодекстрином / А. А. Бакунович [и др.] // Кислород и свободные радикалы : сб. материалов Междунар. науч.- практ. конф., Гродно, 15‒16 мая 2018 г. / Гродн. гос. мед. ун-т ; под ред. В. В. Зинчука. – Гродно, 2018. – С. 10–12.

13. Уплыў кверцэтына і яго камбінацыі з цыкладэкстрынам на загойванне апёкавых ран у лабараторных пацукоў / А. А. Бакунович [i iнш.] // Вес. Нац. акад. навук Беларусi. Сер. мед. наук. – 2019. – № 4. – С. 410–423.

14. Kaur, H. A critical appraisal of solubility enhancement techniques of polyphenols / H. Kaur, G. Kaur // J. Pharmaceutics. – 2014. – Vol. 2014. – P. 1–14. https://doi.org/10.1155/2014/180845

15. Евтеев, А. А. Неудачи аутодермопластики / А. А. Евтеев, Ю. И. Тюрников. – М : OOO «РА ИЛЬФ», 2011. – 159 с.

16. Biologic and synthetic skin substitutes : an overview / A. S. Halim [et al.] // Indian J. Plast. Surg. – 2010. ‒ N 43. – P. 23–28. https://doi.org/10.4103/0970-0358.70712

17. Островский, A. A. Развитие межфолликулярного эпидермиса на поверхности коллагенового каркаса дермы в эксперименте / A. A. Островский, В. О. Шатрова // Бюл. эксперим. биологии и медицины. – 1992. – № 5. – С. 542–545.

18. Островский, А. А. Развитие межфолликулярного эпидермиса крыс после аутотрансплантации / А. А. Островский, О. И. Лэвэ, В. О. Шатрова // Морфология. – 1992. – № 6. – С. 105–112.

19. Состояние сосудистого русла в свободном реваскуляризируемом паховом лоскуте под воздействием различных форм экстракта иловой сульфидной грязи в эксперименте / И. С. Малиновская [и др]. // Сибир. мед. журн. – 2008. – № 4–2. – С. 46–50.

20. Autologous graft thickness affects scar contraction and quality in a porcine excisional wound model / R. K. Chan [et al.] // Plast. Reconstruct. Surg. – Global Open. – 2015. – Vol. 3, N 7. ‒ P. e468. https://doi.org/10.1097/gox.0000000000000426

21. Barker, C. F. The lymphatic status of hamster cheek pouch tissue in relation to its properties as a graft and as a graft site / C. F. Barker, R. E. Billingham // J. Exp. Med. – 1971. – Vol. 133, N 3. – P. 620–639. https://doi.org/10.1084/jem.133.3.620

22. Billingham, R. E. The technique of free skin grafting in mammals / R. E. Billingham, P. B. Medawar // J. Exp. Biol. – 1951. – Vol. 28, N 3. – P. 385–402. https://doi.org/10.1242/jeb.28.3.385

23. Billingham, R. F. The freezing, drying, and storage of mammalian skin / R. F. Billingham, P. B. Medawar // J. Exp. Biol. – 1952. – Vol. 29, N 3. – P. 454–468. https://doi.org/10.1242/jeb.29.3.454

24. IFN-dictates allograft fate via opposing effects on the graft and on recipient CD8 T cell responses / S. M. Coley [et al.] // J. Immunol. – 2008. – Vol. 182, N 1. – P. 225–233. https://doi.org/10.4049/jimmunol.182.1.225

25. Anti-CD40 monoclonal antibody synergizes with CTLA4-Ig in promoting long-term graft survival in murine models of transplantation / C. R. Gilson [et al.] // J. Immunol. – 2009. – Vol. 183, N 3. – P. 1625–1635. https://doi.org/10.4049/jimmunol.0900339

26. Impaired antigen presentation and effectiveness of combined active/passive immunotherapy for epithelial tumors / K. Matsumoto [et al.] // J. Nat. Cancer Institute. – 2004. – Vol. 96, N 21. – P. 1611–1619. https://doi.org/10.1093/jnci/djh301

27. Secretion of IFN- but not IL-17 by CD1d-restricted NKT cells enhances rejection of skin grafts expressing epithelial cell-derived antigen / S. R. Mattarollo [et al.] // J. Immunol. – 2010. – Vol. 184, N 10. – P. 5663‒5669. https://doi.org/10.4049/jimmunol.0903730

28. A new method for skin grafting in murine model / M. Pakyari [et al.] // Wound Repair Regeneration. – 2016. – Vol. 24, N 4. – P. 695‒704. https://doi.org/10.1111/wrr.12445

29. In vivo platelet-endothelial cell interactions in response to major histocompatibility complex alloantibody / C. N. Morrell [et al.] // Circ. Res. – 2008. – Vol. 102, N 7. – P. 777–785. https://doi.org/10.1161/circresaha.107.170332

30. Platelets contribute to allograft rejection through glutamate receptor signaling / A. F. Swaim [et al.] // J. Immunol. – 2010. – Vol. 185, N 11. – P. 6999–7006. https://doi.org/10.4049/jimmunol.1000929

31. Investigation of properties and structural characterization of the quercetin inclusion complex with (2-hydroxypropyl)- β-cyclodextrin / I. M. Savic [et al.]// J. Incl. Phenom. Macrocycl. Chem. – 2015. – Vol. 82, N 3–4. – P. 383–394. https://doi.org/10.1007/s10847-015-0500-4


Для цитирования:


Бакуновіч А.А., Ярашэнка Ю.У., Радута А.Ф., Конанаў Е.В., Буко В.У., Астроўскі А.А. Эксперыментальная мадэль для ацэнкі гатоўнасці ранавай паверхні да прыняцця скурных трансплантатаў. Известия Национальной академии наук Беларуси. Серия медицинских наук. 2021;18(3):340-350. https://doi.org/10.29235/1814-6023-2021-18-3-340-350

For citation:


Bakunovich A.A., Yarashenka Yu.V., Raduta E.F., Kononov E.V., Buko V.U., Astrowski A.A. Experimental model for assessing the readiness of the wound surface to accept skin grafts. Proceedings of the National Academy of Sciences of Belarus, Medical series. 2021;18(3):340-350. (In Russ.) https://doi.org/10.29235/1814-6023-2021-18-3-340-350

Просмотров: 45


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1814-6023 (Print)
ISSN 2524-2350 (Online)