Эксперыментальная мадэль для ацэнкі гатоўнасці ранавай паверхні да прыняцця скурных трансплантатаў

Мэтай даследавання, выкананага на 65 пацуках пароды Вістар, было распрацаваць новую мадэль, каб высветліць, у якой ступені кверцэтын і нанакомплекс кверцэтын-2-гідраксіпрапіл-β-цыкладэкстрын, нанесеныя на рану, уплываюць на прыжыўляльнасць скурных аўтатрансплантатаў. Трансплантаты атрымлівалі з вушных ракавін жывёл, а іх прыжыўляльнасць ацэньвалі па ступені інгібіравання кантракцыі раны. Паказана, што апошняя залежыць ад плошчы трансплантатаў і часу, праз які яны былі размешчаны на ранавай паверхні пасля яе стварэння. Выяўлена, што кверцэтын пагаршае, а кверцэтын-2-гiдраксiпрапiл-β-цыкладэкстрын не пагаршае здольнасць ранавай паверхні прымаць трансплантаты.

1. Falanga, V. Classifications for wound bed preparation and stimulation of chronic wounds / V. Falanga // Wound Repair and Regeneration. – 2000. – Vol. 8, N 5. – P. 347–352. https://doi.org/10.1111/j.1524-475X.2000.00347.x

2. Золтан, Я. Пересадка кожи : пер. с венг. / Я. Золтан. – Будапешт : Акад. наук Венгрии, 1984. – 304 с.

3. Максименя, Г. Г. Клинико-фармакологическая характеристика препаратов для обработки ран / Г. Г. Максименя // Воен. медицина. – 2014. – № 2. – С. 105–114.

4. Nurses’ and surgeons’ views and experiences of surgical wounds healing by secondary intention: a qualitative study / D. McCaughan [et al.] // J. Clin. Nursing. ‒ 2020. ‒ Vol. 29, N 13‒14. – P. 2557–2571. https://doi.org/10.1111/jocn.15279

5. Липатов, К. В. Значение аутотрансплантации расщепленной кожи в гнойной хирургии / К. В. Липатов, Е. А. Комарова // Трансплантология. – 2012. – Т. 1, № 1. – С. 5–9.

6. Об утверждении клинического протокола лечения глубоких ожогов кожи методом трансплантации [Электронный ресурс] : приказ М-ва здравоохр. Респ. Беларусь, 24 марта 2011 г., № 293 // Аналитическая правовая система Бизнес-Инфо. – Режим доступа: http://bii.by/tx.dll?d=226257. – Дата доступа: 22.07.2020.

7. Ambika, A. P. Wound healing activity of plants from the Convolvulaceae family. Advances in wound care / A. P. Ambika, S. N. Nair // Adv. Wound Care. ‒ 2019. ‒ Vol. 1, N 1. ‒ P. 28‒37. https://doi.org/10.1089/wound.2017.0781

8. Quercetin improves inflammation, oxidative stress, and impaired wound healing in atopic dermatitis model of human keratinocytes / B. Beken [et al.] // Adv. Wound Care. ‒ 2020. ‒ Vol. 33, N 2. ‒ P. 69‒79. https://doi.org/10.1089/ped.2019.1137

9. Doersch, K. M. The impact of Quercetin on wound healing relates to changes in αV and β1 integrin expression / K. M. Doersch, M. K. Newell-Rogers // Exp. Biol. Med. – 2017. – Vol. 242, N 14. – P. 1424–1431. https://doi.org/10.1177/1535370217712961

10. Nayak, S. B. Wound-healing potential of oil of Hypercium perforatum in excision wounds of male sprague dawley rats / S. B. Nayak, K. Isik, J. R. Marshall // Adv. Wound Care. – 2017. – Vol. 6, N 12. – P. 401–406. https://doi.org/10.1089/wound.2017.0746

11. Pereira, R. F. Traditional therapies for skin wound healing / R. F. Pereira, P. J. Bártolo // Adv. Wound Care. – 2016. – Vol. 5, N 5. – P. 208–229. https://doi.org/10.1089/wound.2013.0506

12. Ранозаживляющие и иммуномодулирующие свойство нанокомплекса кверцетина с гидроксипропил- β-циклодекстрином / А. А. Бакунович [и др.] // Кислород и свободные радикалы : сб. материалов Междунар. науч.- практ. конф., Гродно, 15‒16 мая 2018 г. / Гродн. гос. мед. ун-т ; под ред. В. В. Зинчука. – Гродно, 2018. – С. 10–12.

13. Уплыў кверцэтына і яго камбінацыі з цыкладэкстрынам на загойванне апёкавых ран у лабараторных пацукоў / А. А. Бакунович [i iнш.] // Вес. Нац. акад. навук Беларусi. Сер. мед. наук. – 2019. – № 4. – С. 410–423.

14. Kaur, H. A critical appraisal of solubility enhancement techniques of polyphenols / H. Kaur, G. Kaur // J. Pharmaceutics. – 2014. – Vol. 2014. – P. 1–14. https://doi.org/10.1155/2014/180845

15. Евтеев, А. А. Неудачи аутодермопластики / А. А. Евтеев, Ю. И. Тюрников. – М : OOO «РА ИЛЬФ», 2011. – 159 с.

16. Biologic and synthetic skin substitutes : an overview / A. S. Halim [et al.] // Indian J. Plast. Surg. – 2010. ‒ N 43. – P. 23–28. https://doi.org/10.4103/0970-0358.70712

17. Островский, A. A. Развитие межфолликулярного эпидермиса на поверхности коллагенового каркаса дермы в эксперименте / A. A. Островский, В. О. Шатрова // Бюл. эксперим. биологии и медицины. – 1992. – № 5. – С. 542–545.

18. Островский, А. А. Развитие межфолликулярного эпидермиса крыс после аутотрансплантации / А. А. Островский, О. И. Лэвэ, В. О. Шатрова // Морфология. – 1992. – № 6. – С. 105–112.

19. Состояние сосудистого русла в свободном реваскуляризируемом паховом лоскуте под воздействием различных форм экстракта иловой сульфидной грязи в эксперименте / И. С. Малиновская [и др]. // Сибир. мед. журн. – 2008. – № 4–2. – С. 46–50.

20. Autologous graft thickness affects scar contraction and quality in a porcine excisional wound model / R. K. Chan [et al.] // Plast. Reconstruct. Surg. – Global Open. – 2015. – Vol. 3, N 7. ‒ P. e468. https://doi.org/10.1097/gox.0000000000000426

21. Barker, C. F. The lymphatic status of hamster cheek pouch tissue in relation to its properties as a graft and as a graft site / C. F. Barker, R. E. Billingham // J. Exp. Med. – 1971. – Vol. 133, N 3. – P. 620–639. https://doi.org/10.1084/jem.133.3.620

22. Billingham, R. E. The technique of free skin grafting in mammals / R. E. Billingham, P. B. Medawar // J. Exp. Biol. – 1951. – Vol. 28, N 3. – P. 385–402. https://doi.org/10.1242/jeb.28.3.385

23. Billingham, R. F. The freezing, drying, and storage of mammalian skin / R. F. Billingham, P. B. Medawar // J. Exp. Biol. – 1952. – Vol. 29, N 3. – P. 454–468. https://doi.org/10.1242/jeb.29.3.454

24. IFN-dictates allograft fate via opposing effects on the graft and on recipient CD8 T cell responses / S. M. Coley [et al.] // J. Immunol. – 2008. – Vol. 182, N 1. – P. 225–233. https://doi.org/10.4049/jimmunol.182.1.225

25. Anti-CD40 monoclonal antibody synergizes with CTLA4-Ig in promoting long-term graft survival in murine models of transplantation / C. R. Gilson [et al.] // J. Immunol. – 2009. – Vol. 183, N 3. – P. 1625–1635. https://doi.org/10.4049/jimmunol.0900339

26. Impaired antigen presentation and effectiveness of combined active/passive immunotherapy for epithelial tumors / K. Matsumoto [et al.] // J. Nat. Cancer Institute. – 2004. – Vol. 96, N 21. – P. 1611–1619. https://doi.org/10.1093/jnci/djh301

27. Secretion of IFN- but not IL-17 by CD1d-restricted NKT cells enhances rejection of skin grafts expressing epithelial cell-derived antigen / S. R. Mattarollo [et al.] // J. Immunol. – 2010. – Vol. 184, N 10. – P. 5663‒5669. https://doi.org/10.4049/jimmunol.0903730

28. A new method for skin grafting in murine model / M. Pakyari [et al.] // Wound Repair Regeneration. – 2016. – Vol. 24, N 4. – P. 695‒704. https://doi.org/10.1111/wrr.12445

29. In vivo platelet-endothelial cell interactions in response to major histocompatibility complex alloantibody / C. N. Morrell [et al.] // Circ. Res. – 2008. – Vol. 102, N 7. – P. 777–785. https://doi.org/10.1161/circresaha.107.170332

30. Platelets contribute to allograft rejection through glutamate receptor signaling / A. F. Swaim [et al.] // J. Immunol. – 2010. – Vol. 185, N 11. – P. 6999–7006. https://doi.org/10.4049/jimmunol.1000929

31. Investigation of properties and structural characterization of the quercetin inclusion complex with (2-hydroxypropyl)- β-cyclodextrin / I. M. Savic [et al.]// J. Incl. Phenom. Macrocycl. Chem. – 2015. – Vol. 82, N 3–4. – P. 383–394. https://doi.org/10.1007/s10847-015-0500-4