Змяненне гісталагічнай структуры селязёнкі пацукоў пад уздзеяннем прэднізалона і яго камбінацыі з вітамінам D

Изучена возможность использования витамина D для нормализации гистологической структуры селезенки лабораторных крыс, измененной под воздействием преднизолона. Животным ежедневно внутрижелудочно на протяжении 3 недель вводили либо физиологический раствор, либо преднизолон в дозе 5 мг/кг массы, либо преднизолон в комбинации с витамином D (в дозе 800 МЕ/кг). Результаты проведенного морфометрического анализа показали, что введение преднизолона ведет к значительному уменьшению размеров селезенки, объема белой пульпы и размеров герминативных центров лимфатических фолликулов в ее составе и к увеличению плотности размещения мегакариоцитов в красной пульпе органа. Указанные эффекты преднизолона в различной степени нивелируются введением витамина D, в частности наблюдается тенденция к нормализации размеров герминативных центров селезенки. Полученные результаты свидетельствуют о целесообразности дальнейшего изучения возможных механизмов коррекции витамином D иммунологической и гемопоэтической функций организма млекопитающих, измененных введением глюкокортикоидов.

1. Godschalk, M. Glucocorticoids decrease vitamin D receptor number and gene expression in human osteosarcoma cells / M. Godschalk, J. R. Levy, R. W. Downs // J. Bone Miner. Res. – 1992. – Vol. 7, N 1. – P. 21–27. https://doi.org/10.1002/jbmr.5650070105

2. Hidalgo, A. A. Glucocorticoid regulation of the vitamin D receptor / A. A. Hidalgo, D. L. Trump, C. S. Johnson // J. Steroid. Biochem. Mol. Biol. – 2010. – Vol. 121, N 1–2. – P. 372–375. https://doi.org/10.1016/j.jsbmb.2010.03.081

3. Dhawan, P. Novel regulation of 25-hydroxyvitamin D3 24-hydroxylase (24(OH)ase) transcription by glucocorticoids: cooperative effects of the glucocorticoid receptor, C/EBP beta, and the Vitamin D receptor in 24(OH)ase transcription / P. Dhawan, S. Christakos // J. Cell Biochem. – 2010. – Vol. 110, N 6. – P. 1314–1323. https://doi.org/10.1002/jcb.22645

4. Kassi, E. Vitamin D affects glucocorticoid action in target cells / E. Kassi, N. Nasiri-Ansari, A. G. Papavassiliou // Oncotarget. – 2017. – Vol. 8, N 5. – P. 7220–7221. https://doi.org/10.18632/oncotarget.13997

5. Moore, K. L. Clinically Oriented Anatomy / K. L. Moore, A. F. Dalley. – 5th ed. – Philadelphia : Lippincott Williams & Wilkins, 2005. – 1029 p.

6. Cumano, A. Ontogeny of the hematopoietic system / A. Cumano, I. Godin // Annu. Rev. Immunol. – 2007. – Vol. 25, N 1. – P. 745–785. https://doi.org/10.1146/annurev.immunol.25.022106.141538

7. Steiniger, B. S. Human spleen microanatomy: why mice do not sufce / B. S. Steiniger // Immunology. – 2015. – Vol. 145, N 3. – Р. 334–346. https://doi.org/10.1111/imm.12469

8. Effects of betel nut on cardiovascular risk factors in a rat model / M. P. Iqbal [el al.] // BMC Cardiovasc. Disord. – 2012. – Vol. 12. – Art. 94. https://doi.org/10.1186/1471-2261-12-94

9. Marien, G. J. Splenic megakaryocytes and circulating platelets in pregnant rats / G. J. Marien, K. D. McFadden // Am. J. Anat. – 1970. – Vol. 128, N 2. – P. 225–233. https://doi.org/10.1002/aja.1001280207

10. Megakaryocyte function and dysfunction / A. Eldor [et al.]. // Baillieres Clin. Haematol. – 1989 – Vol. 2, N 3. – P. 543–568. https://doi.org/10.1016/S0950-3536(89)80033-2

11. Davoine, F. Eosinophil cytokines, chemokines, and growth factors: emerging roles in immunity / F. Davoine, P. Lacy // Front. Immunol. – 2014. – Vol. 5. – Art. 570. https://doi.org/10.3389/fmmu.2014.00570

12. Thermal injury increases the number of eosinophil progenitors in rat spleen and bone marrow / J. G. Noel [et al.] // Inflammation. – 2001. – Vol. 25, N 5. – P. 339–349.

13. Bro-Rasmussen, F. Effect of Cortisol on the Eosinophils in the Rat Spleen. Autoradiographic Studies / F. BroRasmussen // Scan. J. Haematol. – 1973. – Vol. 11, N 1. – P. 59–70. https://doi.org/10.1111/j.1600-0609.1973.tb00096.x

14. Shephard, R. J. Responses of the human spleen to exercise / R. J. Shephard // J. Sports Sci. – 2016. – Vol. 34, N 10. – P. 929–936. https://doi.org/10.1080/02640414.2015.1078488

15. The hematopoietic effects of prednisone therapy in four infants with osteopetrosis / J. D. Reeves [et al.] // J. Pediatr. – 1979. – Vol. 94, N 2. – Р. 210–214. https://doi.org/10.1016/s0022-3476(79)80825-2

16. Prednisone treatment inhibits the differentiation of B lymphocytes into plasma cells in MRL/MpSlac-lpr mice / S.-X. Yan [et al.] // Acta Pharmacol. Sin. – 2015. – Vol. 36, N 11. – Р. 1367–1376. https://doi.org/10.1038/aps.2015.76

17. Бобрышева, И. В. Морфологическая реактивность селезенки крыс различных возрастных периодов при иммуностимуляции / И. В. Бобрышева // Журн. клін. та експерим. мед. досліджень. – 2013. – Т. 1, № 3. – С. 315–321.

18. Кащенко, С. А. Особенности гистологического строения белой пульпы селезенки крыс в разные периоды постнатального онтогенеза в условиях экспериментальной иммуносупрессии / С. А. Кащенко, И. В. Бобрышева // Журн. Гродн. гос. мед. ун-та. – 2014. – № 1. С. 51–54.

19. Hogquist, K. A. Central tolerance: learning self-control in the thymus / K. A. Hogquist, T. A. Baldwin, S. C. Jameson // Nat. Rev. Immunol. – 2005. – Vol. 5, N 10. – P. 772–782. https://doi.org/10.1038/nri1707

20. Gordon, M. S. Growth factors affecting human thrombocytopoiesis: potential agents for the treatment of thrombocytopenia / M. S. Gordon, R. Hoffman // Blood. – 1992. – Vol. 80, N 2. – P. 302–307.

21. Presence of a defect in karyokinesis during megakaryocyte endomitosis / L. Lordier [et al.] // Cell Cycle. – 2012. – Vol. 11, N 23. – P. 4385–4389. https://doi.org/10.4161/cc.22712

22. Anastasi, J. Some observations on the geometry of megakaryocyte mitotic fgures: Buckyballs in the bone marrow / J. Anastasi // Blood. – 2011. – Vol. 118, N 24. – P. 6473–6474. https://doi.org/10.1182/blood-2011-08-374074

23. Lisse, T. S. Vitamin D. A new player in the world of mTOR signaling / T. S. Lisse, M. Hewison // Cell Cycle. – 2011. – Vol. 10, N 12. – P. 1888–1889. https://doi.org/10.4161/cc.10.12.15620