МОРФОЛОГИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА ЭФФЕКТИВНОСТИ ЭВЕРТИРОВАННОГО МЕХАНИЧЕСКОГО ШВА, УКРЫТОГО АМНИОТИЧЕСКОЙ МЕМБРАНОЙ, ПРИ РАЗРЫВЕ ТОНКОЙ КИШКИ В УСЛОВИЯХ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО ПЕРИТОНИТА

Дана оценка морфологическим изменениям в зоне укрытого криоконсервированной амниотической мембраной эвертированного механического шва поврежденной тонкой кишки, наложенного в условиях экспериментального перитонита. С помощью разработанной оригинальной экспериментальной модели выполнено моделирование разрыва тонкой кишки у 54 кроликов. Поврежденную петлю кишки погружали в брюшную полость и при повторной операции ушивали в условиях перитонита. Все экспериментальные животные были разделены на две группы: П3 (поврежденную петлю тонкой кишки ушивали через 3 ч после ее повреждения) и П24 (ушивание поврежденной кашки проводили через 24 ч после ее повреждения). В каждой группе выделены по три подгруппы: РШ (на поврежденную тонкую кишку накладывали швы вначале Шмидена, затем Ламбера), СТ (ушивание поврежденной тонкой кишки выполнено эвертированным механическим швом с перитонизацией его швом Ламбера) и СТ + АМ (накладывали эвертированный механический шов, укрытый лоскутом криоконсервированной амниотической мембраны). Животных выводили из эксперимента после выполнения ушивания поврежденной кишки на 7, 14 и 30-е сутки. При морфологическом исследовании зоны анастомоза, наложенного эвертированным механическим швом и укрытого лоскутом криоконсервированной амниотической мембраны, установлено, что независимо от длительности протекания перитонита и сроков выведения животных из эксперимента менее выражена воспалительная реакция, меньше толщина фиброзного рубца в зоне дефекта стенки кишки и менее интенсивное формирование фиброзных спаек вне зоны повреждения, чем в группах контроля. Морфологические изменения в зоне ушивания разрыва стенки тонкой кишки в эксперименте показали высокую эффективность в условиях экспериментального перитонита эвертированного механического шва, который укрыт лоскутом криоконсервированной амниотической мембраны. 

1. Завада, Н. В. Диагностика и лечение повреждений тонкой и толстой кишки при изолированной и сочетанной травме живота / Н. В. Завада, О. Е. Волков // Экстрен. медицина. – 2014. – № 3. – С. 80–98.

2. Запорожец, А. А. Причины возникновения спаек брюшины после первичных асептических операций на желудочно-кишечном тракте и метод их профилактики / А. А. Запорожец // Вестн. хирургии им. И. И. Грекова. – 2011. – Т. 170, № 2. – С. 14–20.

3. Тотчиев, Г. Ф. Спаечная болезнь: физиологические аспекты, механизмы предупреждения / Г. Ф. Тотчиев // Эффектив. фармакотерапия. – 2013. – № 28. – С. 18–21.

4. Plasminogen activators and inhibitors in peritoneal tissue / L. Holmdahl [et al.] // APMIS. – 1997. – Vol. 105, suppl. 1. – P. 25–30.

5. Raftery, A. T. Effect of peritoneal trauma on peritoneal fibrinolytic activity and intraperitoneal adhesion formation. An experimental study in the rat / A. T. Raftery // Eur. Surg. Res. – 1981. – Vol. 13, N 6. – P. 397–401.

6. Human intraperitoneal fibrinolytic response to elective surgery / D. Scott-Coombes [et al.] // Br. J. Surg. – 1995. – Vol. 82, N 3. – P. 414–417.

7. Mutsaers, S. E. Mesothelial cells: their structure, function and role in serosal repair / S. E. Mutsaers // Respirology. – 2002. – Vol. 7, N 3. – P. 171–191.

8. Mutsaers, S. E. The mesothelial cell / S. E. Mutsaers // Int. J. Biochem. Cell Biol. – 2004. – Vol. 36, N 1. – P. 9–16.

9. Качуровский, И. С. О дренировании брюшной полости / И. С. Качуровский // Клин. хирургия. – 1986. – № 1. – С. 63.

10. The histophysiology and pathophysiology of the peritoneum / J. O. van Baal [et al.] // Tissue Cell. – 2017. – Vol. 49 (1). – P. 95–105.

11. Di Zerega, G. S. Peritoneum, peritoneal healing and adhesion formation / G. S. Di Zerega, J. D. Campeau // Peritoneal. – NY: Springer-Verlag; Berlin: Heilderbergh, 2006. – P. 3–38.

12. Kamel, R. M. Prevention of postoperative peritoneal adhesions / R. M. Kamel // Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. – 2010. – Vol. 150, N 2. – P. 111–118.

13. Effects of topical treatment with euphorbia tirucalli latex on the survival and intestinal adhesions in rats with experimental peritonitis / L. A. de Araújo // Arq. Bras. Cir. Dig. – 2015. – Vol. 28 (4). – P. 243–246.

14. Effects of hydrophilic polyethylene glycol-based adhesion barrier use to prevent intra-abdominal adhesions in intra-abdominal sepsis model / G. S. Ozbalci [et al.] // Indian J. Surg. – 2015. – Vol. 77 (suppl. 2). – P. 398–402.

15. Возможности, результаты и перспективы укрепления кишечных швов фибрин-коллагеновой субстанцией «ТахоКомб» / Б. К. Шуркалин [и др.] // Хирургия. – 2004. – № 2. – С. 53–55.

16. Effect of the combination of fibrin glue and growth hormone on intestinal anastomoses in a pig model of traumatic shock associated with peritonitis / P. Wang [et al.] // World J. Surg. – 2009. – Vol. 33, N 3. – Р. 567–576.

17. Influence of lipid membrane rigidity on properties of supporting polymer / M. S. Jablin [et al.] // Biophys. J. – 2011. – Vol. 101, N 1. – P. 128–133.

18. Amniotic membrane: from structure and functions to clinical applications / A. Mamede [et al.] // Cell Tissue Res. – 2012. – Vol. 349, N 2. – P. 447–458.

19. The clinical applications of human amnion in plastic surgery / N. Fairbairn [et al.] // J. Plast. Reconstr. aesthetic Surg. – 2014. – Vol. 67. – P. 662–675.

20. Amniotic membrane and amniotic cells: Potential therapeutic tools to combat tissue inflammation and fibrosis? / U. Manuelpillai [et al.] // Placenta. – 2011. – Vol. 32, N 4. – P. S320–S325.

21. Applications of amniotic membrane and fluid in stem cell biology and regenerative medicine / K. Rennie [et al.] // Stem Cells Int. – 2012. – Vol. 2012. – Article ID 721538.

22. Covering the colon anastomoses with amniotic membrane prevents the negative effects of early intraperitoneal 5-FU administration on anastomotic healing / M. Uludag [et al.] // Int. J. Colorectal Dis. – 2010. – Vol. 25, N 2. – P. 223–232.