ВЛИЯНИЕ АЛЬФА-КОБРАТОКСИНА НА ОКИСЛИТЕЛЬНЫЙ СТРЕСС, ИНДУЦИРОВАННЫЙ БЕССЫВОРОТОЧНОЙ СРЕДОЙ В КЛЕТКАХ ГЛИОМЫ С6
https://doi.org/10.29235/1814-6023-2018-15-2-199-206
Аннотация
На модели клеток глиомы С6 показано, что роль никотиновых ацетилхолиновых рецепторов (нАХР) в регуляции окислительно-восстановительного баланса по-разному проявляется в различных условиях культивирования. В бессывороточной среде ингибитор нАХР альфа-кобратоксин противодействует окислительному стрессу, повышая активность супероксиддисмутазы и каталазы, уровень восстановленного глутатиона и снижая концентрацию малонового диальдегида.
Ключевые слова
никотиновые ацетилхолиновые рецепторы,
альфа-кобратоксин,
супероксид,
глутатион,
супероксиддисмутаза
Об авторах
Т. И. Терпинская
Институт физиологии НАН Беларуси.
Беларусь
Беларусь
Терпинская Татьяна Ильинична – канд. биол. наук, вед. науч. сотрудник.
ул. Академическая, 28, 220072, г. Минск.
А. В. Осипов
Институт биоорганической химии им. М. М. Шемякина и Ю. А. Овчинникова РАН.
Россия
Россия
Осипов Алексей Валерьевич – канд. хим. наук, ст. науч. сотрудник.
ул. Миклухо-Маклая, 16/10, 117997, г. Москва.
С. Б. Кондрашова
Институт физиологии НАН Беларуси.
Беларусь
Беларусь
Кондрашова Светлана Болеславовна – ст. науч. со– ст. науч. сотрудник.
ул. Академическая, 28, 220072, г. Минск.
В. С. Улащик
Институт физиологии НАН Беларуси.
Беларусь
Беларусь
Улащик Владимир Сергеевич – академик, д-р мед. наук, гл. науч. сотрудник.
ул. Академическая, 28, 220072, г. Минск.
Ю. Н. Уткин
Институт биоорганической химии им. М. М. Шемякина и Ю. А. Овчинникова РАН.
Россия
Россия
Уткин Юрий Николаевич – д-р хим. наук, гл. науч. сотрудник.
ул. Миклухо-Маклая, 16/10, 117997, г. Москва.
Список литературы
1. Nicotine mediates oxidative stress and apoptosis through cross talk between NOX1 and Bcl-2 in lung epithelial cells / F. Zanetti [et al.] // Free Radical Biology and Medicine. – 2014. – Vol. 76. – P. 173–184. DOI: 10.1016/j.freeradbiomed.2014.08.002
2. Maternal nicotine exposure leads to higher liver oxidative stress and steatosis in adult rat offspring / E. P. Conceição [et al.] // Food and Chemical Toxicology. – 2015. – Vol. 78. – P. 52–59. DOI: 10.1016/j.fct.2015.01.025
3. Nicotine induces podocyte apoptosis through increasing oxidative stress / X. Lan [et al.] // PLoS One. – 2016. – Vol. 11, N 12. – P. e0167071. DOI: 10.1371/journal.pone.0167071
4. Niu, X.-M. Acetylcholine receptor pathway in lung cancer: new twists to an old story / X.-M. Niu, S. Lu // World J. of Clinical Oncology. – 2014. – Vol. 5, N 4. – P. 667–676. DOI: 10.5306/wjco.v5.i4.667
5. Ion channals gated by acetilcholin by acetylcholine and serotonin: structures, biology, and drug discovery / Z. S. Wu [et al.] // Acta Pharmacologica Sinica. – 2015. – Vol. 36, N 8. – P. 895–907. DOI: 10.1038/aps.2015.66
6. Nicotine exposure and the progression of chronic kidney disease: role of the α7-nicotinic acetylcholine receptor / G. Rezonzew [et al.] // Amer. J. of Physiology-Renal Physiology. – 2012. – Vol. 303, N 2. – P. F304–F312. DOI: 10.1152/ajprenal.00661.2011
7. Activation of nicotinic acetylcholine receptor prevents the production of reactive oxygen species in fibrillar β amyloid peptide (1-42)-stimulated microglia / J. H. Moon [et al.] // Experimental and Molecular Medicine. – 2008. – Vol. 40, N 1. – P. 11–18. DOI: 10.3858/emm.2008.40.1.11
8. Acetylcholine and antibodies against the acetylcholine receptor protect neurons and astrocytes against beta-amyloid toxicity / A. V. Kamynina [et al.] // Intern. J. of Biochemistry and Cell Biology. – 2013. – Vol. 45, N 4. – P. 899–907. DOI: 10.1016/j.biocel.2013.01.011
9. Activation of α7 nicotinic acetylcholine receptors protects astrocytes against oxidative stress-induced apoptosis: implications for Parkinson’s disease / Y. Liu [et al.] // Neuropharmacology. – 2015. – Vol. 91. – P. 87–96. DOI: 10.1016/j.neuropharm.2014.11.028
10. Alpha-7 nicotinic acetylcholine receptor agonist treatment reduces neuroinflammation, oxidative stress, and brain injury in mice with ischemic stroke and bone fracture / Z. Han [et al.] // J. of Neurochemistry. – 2014. – Vol. 131, N 4. – P. 498–508. DOI: 10.1111/jnc.12817
11. Nirthanan, S. Three-finger alpha-neurotoxins and the nicotinic acetylcholine receptor, forty years on / S. Nirthanan, M. C. Gwee // J. of Pharmacological Sciences. – 2004. – Vol. 94, N 1. – P. 1–17. DOI: 10.1254/jphs.94.1
12. Wang, Z. F. Huperzine A protects C6 rat glioma cells against oxygen-glucose deprivation-induced injury / Z. F. Wang, X. C. Tang // FEBS Letters. – 2007. – Vol. 581, N 4. – P. 596–602. DOI: 10.1016/j.febslet.2007.01.016
13. Niranjan, R. Melatonin attenuated mediators of neuroinflammation and alpha-7 nicotinic acetylcholine receptor mRNA expression in lipopolysaccharide (LPS) stimulated rat astrocytoma cells, C6 / R. Niranjan, C. Nath, R. Shukla // Free Radical Research. – 2012. – Vol. 46, N 9. – P. 1167–1177. DOI: 10.3109/10715762.2012.697626
14. Dimeric α-cobratoxin X-ray structure: localization of intermolecular disulfi des and possible mode of binding to nicoα-cobratoxin X-ray structure: localization of intermolecular disulfi des and possible mode of binding to nico-cobratoxin X-ray structure: localization of intermolecular disulfides and possible mode of binding to nicotinic acetylcholine receptors / A. V. Osipov [et al.] // J. of Biological Chemistry. – 2012. – Vol. 287. – P. 6725–6734. DOI: 10.1074/jbc.M111.322313
15. Метод определения активности каталазы / М. А. Королюк [и др.] // Лаб. дело. – 1988. – № 1. – С. 16–19.
16. Костюк, В. А. Простой и чувствительный метод определения активности супероксиддисмутазы, основанный на реакции окисления кверцетина / В. А. Костюк, А. И. Потапович, Ж. В. Ковалева // Вопр. мед. химии. – 1990. – Т. 36, № 2. – С. 88–91.
17. Oxy-radical metabolism and control of tumour growth / T. Galeotti [et al.] // Xenobiotica. – 1991. – Vol. 21, N 8. – P. 1041–1051. DOI: 10.3109/00498259109039544
18. Разыграев, А. В. Определение глутатионпероксидазной активности в сыворотке крови человека с использованием пероксида водорода и 5,5′-дитиобис (2-нитробензойной кислоты) / А. В. Разыграев А. В. Арутюнян // Клин. лаб. диагностика. – 2006. – № 6. – С. 13–16.
19. Modulation of mitochondrial metabolic function by phorbol 12-myristate 13-acetate through increased mitochondrial translocation of protein kinase Cα in C2C12 myocytes / Y. Wang [et al.] // Biochemical Pharmacology. – 2006. – Vol. 72, N 7. – Р. 881–892. DOI: 10.1016/j.bcp.2006.06.032
20. The protein kinase C inhibitor Aeb071 (sotrastaurin) modulates migration and superoxide anion production by human neutrophils in vitro / F. Capsoni [et al.] // Intern. J. of Immunopathology and Pharmacology. – 2012. – Vol. 25, N 3. – P. 617– 626. DOI: 10.1177/039463201202500308
21. Nicotine-induced apoptosis in human renal proximal tubular epithelial cells / C. S. Kim [et al.] // PLoS One. – 2016. – Vol. 11, N 3. – P. e0152591. DOI: 10.1371/journal.pone.0152591
22. Steinberg, S. F. Mechanisms for redox-regulation of protein kinase C / S. F. Steinberg // Frontiers in Pharmacology. – 2015. – Vol. 6. – P. 128. DOI: 10.3389/fphar.2015.00128
23. Shen, J. Nicotinic acetylcholine receptor-mediated calcium signaling in the nervous system / J. Shen, J. L. Yakel // Acta Pharmacologica Sinica. – 2009. – Vol. 30, N 6. – Р. 673–680. DOI: 10.1038/aps.2009.64
24. Transforming growth factor-beta and oxidative stress interplay: implications in tumorigenesis and cancer progression / J. Krstić [et al.] // Oxidative Medicine and Cellular Longevity. – 2015. – Vol. 2015. – 15 p. DOI: 10.1155/2015/654594
25. Fibroblast growth factor 21 protects the heart from oxidative stress / A. Planavila [et al.] // Cardiovascular Research. – 2014. – Vol. 106, N 1. – P. 19–31. DOI: 10.1093/cvr/cvu263
26. Arda-Pirincci, P. The role of epidermal growth factor in prevention of oxidative injury and apoptosis induced by intestinal ischemia/reperfusion in rats / P. Arda-Pirincci, S. Bolkent // Acta Histochemica. – 2014. – Vol. 116, N 1. – P. 167– 175. DOI: 10.1016/j.acthis.2013.07.005
27. Lushchak, V. I. Free radicals, reactive oxygen species, oxidative stress and its classification / V. I. Lushchak // Chemico-Biological Interactions. – 2014. – Vol. 224. – P. 164–175. DOI: 10.1016/j.cbi.2014.10.016
28. In vitro effect of sodium fluoride on malondialdehyde concentration and on superoxide dismutase, catalase, and glutathione peroxidase in human erythrocytes / J. Gutiérrez-Salinas [et al.] // The Scientific World J. – 2013. – Vol. 2013. – 7 p. DOI: 10.1155/2013/864718
Рецензия
Для цитирования:
Терпинская Т.И., Осипов А.В., Кондрашова С.Б., Улащик В.С., Уткин Ю.Н. ВЛИЯНИЕ АЛЬФА-КОБРАТОКСИНА НА ОКИСЛИТЕЛЬНЫЙ СТРЕСС, ИНДУЦИРОВАННЫЙ БЕССЫВОРОТОЧНОЙ СРЕДОЙ В КЛЕТКАХ ГЛИОМЫ С6. Известия Национальной академии наук Беларуси. Серия медицинских наук. 2018;15(2):199-206. https://doi.org/10.29235/1814-6023-2018-15-2-199-206
For citation:
Terpinskaya T.I., Osipov A.V., Kondrashova S.B., Ulashchyk V.S., Utkin Yu.N. EFFECT OF ALPHA-COBRATOXIN ON THE OXIDATIVE STRESS INDUCED BY A SERUM-FREE MEDIUM IN C6 GLIOMA CELLS. Proceedings of the National Academy of Sciences of Belarus, Medical series. 2018;15(2):199-206. (In Russ.) https://doi.org/10.29235/1814-6023-2018-15-2-199-206
Просмотров: 551
Послать статью по эл. почте 