ВЛИЯНИЕ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ EM-1 И EMX-GOLD НА БИОКИНЕТИКУ 137CS В ОРГАНИЗМЕ ЛАБОРАТОРНЫХ ЖИВОТНЫХ

Исследовано влияние микробиологических препаратов EM-1 и EMX-Gold на накопление и выведение 137Cs у белых лабораторных крыс-самцов при пероральном введении радионуклида. EM-1 является симбиотическим комплексом
культивируемых микроорганизмов: молочнокислых бактерий, дрожжевых грибов, пурпурных фотосинтезирующих бактерий. EMX-Gold – биологически активная добавка на основе экстракта из EM-1, в состав которой входит набор вторичных метаболитов, выделенных из симбиотической культуры микроорганизмов.  Содержание 137Cs в суточном рационе составляло 34,95  ±   5,62 Бк/сут. Через 2 мес. содержания животных на корме, загрязненном 137Cs, достигнута равновесная активность радиоизотопа в организме животных, составившая 210–230 Бк/кг. Через
8 сут после перевода на условно чистый рацион выведено 36–39  % накопленного 137Cs�. При хроническом перораль-. пероральном поступлении 137Cs его эффективный период полувыведения из организма 8-месячных крыс составил 352  ± 69 ч, 10-месячных – 394  ± 148 ч. Введение в рацион ЕМ-1 и EMX-Gold на протяжении 2 мес. сокращало период полувыведения цезия на 16–19  % (p  < 0,15). При 4-месячном содержании крыс-самцов на загрязненном радиоактивным цезием рационе постоянное добавление в питьевую воду микробиологических добавок ЕМ-1 и EMX-Gold не изменяло скорость выведения радиоизотопа из организма.

цезий, период полувыведения, молочнокислые бактерии, пурпурные бактерии, дрожжевые грибы

1. Кузьменко, М. И. Радиоэкология природных вод на стыке тысячелетий / М. И. Кузьменко, Г. Г. Поликарпов // Гидробиол. журн. – 2000. – Т. 36, № 2. – С. 60–76.

2. Василенко, И. Я. Радиоактивный цезий / И. Я. Василенко, О. И. Василенко // Энергия: экономика, техника, экология. – 2001. – № 7. – С. 16–22.

3. Радиобиология инкорпорированных радионуклидов / В. С. Калистратова [и др.]; под ред. В. С. Калистратовой. – М.: Изд-во ФМБЦ им. А. И. Бурназяна ФМБА России, 2012. – 464 с.

4. Булдаков, Л. А. Радиоактивные вещества и человек / Л. А. Булдаков. – М.: Энергоатомиздат, 1990. – 160 с.

5. Avery, S. V. Replacement of cellular potassium by caesium in Chlorella emersonii: differential sensitivity of photoautotrophic and chemoheterotrophic growth / S. V. Avery, G. A. Godd, G. M. Gadd // J. Gen. Microbiol. – 1992. – Vol. 138. – P. 69–76.

6. Avery, S. V. Transport kinetics, cation inhibition and intracellular location of accumulated caesium in the green microalga Chlorella salina / S. V. Avery, G. A. Codd, G. M. Gadd // J. Gen. Microbiol. – 1993. – Vol. 139. – P. 827–834.

7. Avery, S. V. Caesium accumulation and interactions with other monovalent cations in the cyanobacterium Synechosystis PCC 6803 / S. V. Avery, G. A. Codd, G. M. Gadd // J. Gen. Microbiol. – 1991. – Vol. 137. – P. 405–413.

8. Bakken, L. R. Accumulation of radiocaesium in fulgi / L. R. Bakken, R. A. Olsen // Can. J. Microbiol. – 1990. – Vol. 36. – P. 704–710.

9. Perkins, J. Caesium toxicity, accumulation and intracellular localization in yeast / J. Perkins, G. M. Gadd // Mycol. Res. – 1993. – Vol. 97, N 6. – P. 717–724.

10. Avery, S. V. Caesium transport in the cyanobacterium Anabaena variabilis: kinetics and evidence for uptake via ammonium transport system(s) / S. V. Avery, G. A. Codd, G. M. Gadd // FEMS Microbiol. Lett. – 1992. – Vol. 95. – P. 253–258.

11. Common nitrogen control of caesium uptake, caesium toxicity and ammonium (methylammonium) uptake in the cyanobacterium Nostoc muscorum / S. Singh [et al.] // FEMS Microbiol. Lett. – 1994. – Vol. 117, N 3. – P. 243–248.

12. Perkins, J. The influence of pH and external K+ concentration on caesium toxicity and accumulation in Escherichia coli and Bacillus subtilis / J. Perkins, G. M. Gadd // J. Ind. Microbiol. – 1995. – Vol. 14, N 34. – P. 218–225.

13. Tomioka, N. Isolation and Characterization of Cesium Accumulating Bacteria / N. Tomioka, H. Uchiyama, O. Yagi // Appl. Environ. Microbiol. – 1992. – Vol. 58, N 3. – P. 1019–1023.

14. Tomioka, N. Cesium Accumulation and Growth Characteristics of Rhodococcus erythropolis CS98 and Rhodococcus sp. Strain CS402 / N. Tomioka, H. Uchiyama, O. Yagi // Appl. Environ. Microbiol. – 1994. – Vol. 60, N 7. – P. 2227–2231.

15. Ившина, И. Б. Эффективное извлечение цезия клетками бактерий рода Rhodococcus / И. Б. Ившина, Т. А. Пешкур,В. П. Коробов // Микробиология. – 2002. – Т. 71, № 3. – С. 418–423.

16. Johnson, E. E. An autoradiographic technique for selecting 137Cs sorbing microorganisms from soil / E. E. Johnson, A. G. O’Donnell, P. Ineson // J. Microbiol. Meth. – 1991. – Vol. 13. – P. 293–298.

17. Andersson, C. E. Activation of ribokinase by monovalent cations / C. E. Andersson, S. L. Mowbray // J. Mol. Biol. – 2002. – Vol. 315, N 3. – P. 409–419.

18. Jasper, P. Potassium transport system of Rhodopseudomonas capsulate / P. Jasper // J. Bacteriol. – 1978 – Vol. 133, N 3. – P. 1314–1322.