Preview

Известия Национальной академии наук Беларуси. Серия медицинских наук

Пашыраны пошук

Триптофан и цинк: влияние совместного введения на гомеостаз свободных аминокислот плазмы

https://doi.org/10.29235/1814-6023-2024-21-1-43-52

Анатацыя

Одна из основных гидрофобных аминокислот – триптофан и незаменимый микроэлемент цинк вы­полняют в организме млекопитающих многочисленные и во многом перекрывающиеся функции. Огромное количе­ство цинксодержащих соединений (белки, ферменты, факторы транскрипции и гормоны) взаимодействуют с мета­болитами триптофана. Нами предпринята попытка выявить основные эффекты аминокислоты и микроэлемента на показатели метаболизма аминокислот с целью определения общих механизмов и целесообразности их возможного терапевтического использования.

Нами обнаружено, что при курсовом введении триптофана в дозе 40 мг/кг в плазме крови снижается общее ко­личество АРУЦ и повышается концентрация свободного триптофана. У животных, получавших цинка диаспартат или цинка диаспартат совместно с триптофаном, снижалось общее количество аминокислот и их азотсодержащих метаболитов в плазме крови. Анализ индивидуальных концентраций аминокислот и их азотсодержащих метаболи­тов показал, что совместное введение триптофана и цинка диаспартата сопровождается статистически значимыми изменениями концентраций большинства изучаемых показателей аминокислотного пула (19 из 35 показателей). Сле­дует отметить однонаправленность изменений содержания свободных аминокислот и их азотсодержащих метаболи­тов в группах животных, получавших цинка диаспартат или цинка диаспартат совместно с триптофаном (совпаде­ние эффектов составляет 90 %).

Таким образом, проведенные нами исследования показали, что курсовое введение цинка диаспартата в дозе 25 мг/кг массы (в 2 раза превышает среднюю терапевтическую дозу) оказывает выраженный метаболический эф­фект, характеризующийся изменениями концентраций свободных аминокислот и их азотсодержащих метаболитов в плазме крови. Курсовое введение триптофана в дозе 40 мг/кг массы (1/2 терапевтической дозы) не оказывает суще­ственного влияния на показатели аминограммы плазмы крови. При совместном введении цинка диаспартата и трип­тофана в указанных дозах выявленные изменения в большей степени можно отнести к эффектам цинка диаспартата. 

Аб аўтарах

В. Шейбак
Гродненский государственный медицинский университет
Беларусь


А. Павлюковец
Гродненский государственный медицинский университет
Беларусь


Е. Дорошенко
Гродненский государственный медицинский университет
Беларусь


Спіс літаратуры

1. Tryptophan biochemistry: structural, nutritional, metabolic, and medical aspects in humans / L. Palego [et al.] // J. Amino Acids. – 2016. – Vol. 2016. – Art. 8952520. https://doi.org/10.1155/2016/8952520

2. Zinc and its importance for human health: An integrative review / N. Roohani [et al.] // J. Res. Med. Sci. – 2013. – Vol. 18, N 2. – P. 144‒157.

3. Makita, S. Post-transcriptional regulation of immune responses and inflammatory diseases by RNA-binding ZFP36 family proteins / S. Makita, H. Takatori, H. Nakajima // Front Immunol. – 2021. – Vol. 12. – Art. 711633. https://doi.org/10.3389/fimmu.2021.711633

4. Tryptophan supplementation enhances intestinal health by improving gut barrier function, alleviating inflammation, and modulating intestinal microbiome in lipopolysaccharide-challenged piglets / G. Liu [et al.] // Front Microbiol. – 2022. – Vol. 13. – Art. 919431. https://doi.org/10.3389/fmicb.2022.919431

5. Effect of tryptophan and kynurenine on cell proliferation in tissue culture of the cerebral cortex in young and old rats / N. I. Chalisova [et al.] // Adv. Gerontol. – 2019. – Vol. 9. – P. 186–189. https://doi.org/10.1134/S2079057019020073

6. Tryptophan-derived catabolites are responsible for inhibition of T and natural killer cell proliferation induced by indoleamine 2,3-dioxygenase / G. Frumento [et al.] // J. Exp. Med. – 2002. – Vol. 196, N 4. – P. 459‒468. https://doi.org/10.1084/jem.20020121

7. The effect of IV L-tryptophan on prolactin, growth hormone, and mood in healthy subjects / D. S. Charney [et al.] // Psychopharmacology (Berl). – 1982. – Vol. 78, N 1. – P. 38‒43. https://doi.org/10.1007/BF00470585

8. Cunningham, B. C. Dimerization of human growth hormone by zinc / B. C. Cunningham, M. G. Mulkerrin, J. A. Wells // Science. – 1991. – Vol. 253, N 5019. – P. 545‒548. https://doi.org/10.1126/science.1907025

9. Oxenkrug, G. Insulin resistance and dysregulation of tryptophan-kynurenine and kynurenine-nicotinamide adenine dinucleotide metabolic pathways / G. Oxenkrug // Mol. Neurobiol. – 2013. – Vol. 48, N 2. – P. 294‒301. https://doi.org/10.1007/ s12035-013-8497-4

10. The effect of zinc supplementation in pre-diabetes: A protocol for systematic review and meta-analysis / X. Du [et al.] // Medicine (Baltimore). – 2019. – Vol. 98, N 27. – P. e16259. https://doi.org/10.1097/MD.0000000000016259

11. Tryptophan metabolism, inflammation, and oxidative stress in patients with neurovascular disease / M. Hajsl [et al.] // Metabolites. – 2020. – Vol. 10, N 5. – Art. 208. https://doi.org/10.3390/metabo10050208

12. Melatonin as an antioxidant: under promises but over delivers / R. J. Reiter [et al.] // J. Pineal Res. – 2016. – Vol. 61, N 3. – P. 253‒278. https://doi.org/10.1111/jpi.12360

13. Slepchenko, K. G. Cross talk between increased intracellular zinc (Zn2+) and accumulation of reactive oxygen species in chemical ischemia / K. G. Slepchenko, Q. Lu, Y. V. Li // Am. J. Physiol. Cell Physiol. – 2017. – Vol. 313, N 4. – P. C448‒C459. https://doi.org/10.1152/ajpcell.00048.2017

14. Hübner, C. Interactions of zinc- and redox-signaling pathways / C. Hübner, H. Haase // Redox Biol. – 2021. – Vol. 41. – Art. 101916. https://doi.org/10.1016/j.redox.2021.101916

15. Muthuraman, P. Analysis of dose-dependent effect of zinc oxide nanoparticles on the oxidative stress and antioxidant enzyme activity in adipocytes / P. Muthuraman, K. Ramkumar, D. H. Kim // Appl. Biochem. Biotechnol. – 2014. – Vol. 174, N 8. – P. 2851‒2863. https://doi.org/10.1007/s12010-014-1231-5

16. Tryptophan administration in rats enhances phagocytic function and reduces oxidative metabolism / S. Sanchez [et al.] // Neuro Endocrinol. Lett. – 2008. – Vol. 29, N 6. – P. 1026‒1032.

17. León-Ponte, M. Serotonin provides an accessory signal to enhance T-cell activation by signaling through the 5-HT7 receptor / M. León-Ponte, G. P. Ahern, P. J. O’Connell // Blood. – 2007. – Vol. 109, N 8. – P. 3139‒3146. https://doi.org/10.1182/blood-2006-10-052787

18. Wessels, I. Zinc as a gatekeeper of immune function / I. Wessels, M. Maywald, L. Rink // Nutrients. – 2017. – Vol. 9, N 12. – Art. 1286. https://doi.org/10.3390/nu9121286

19. Lindseth, G. The effects of dietary tryptophan on affective disorders / G. Lindseth, B. Helland, J. Caspers // Arch. Psychiatr. Nurs. – 2015. – Vol. 29, N 2. – P. 102‒107. https://doi.org/10.1016/j.apnu.2014.11.008

20. Zinc is involved in depression by modulating G protein-coupled receptor heterodimerization / M. Tena-Campos [et al.] // Mol. Neurobiol. – 2016. – Vol. 53, N 3. – P. 2003‒2015. https://doi.org/10.1007/s12035-015-9153-y

21. Kynurenine is an endothelium-derived relaxing factor produced during inflammation / Y. Wang [et al.] // Nat. Med. – 2010. – Vol. 16, N 3. – P. 279‒285. https://doi.org/10.1038/nm.2092

22. Zinc regulates iNOS-derived nitric oxide formation in endothelial cells / M. M. Cortese-Krott [et al.] // Redox Biol. – 2014. – Vol. 16, N 2. – P. 945‒954. https://doi.org/10.1016/j.redox.2014.06.011

23. Gut microbiota-produced tryptamine activates an epithelial g-protein-coupled receptor to increase colonic secretion / Y. Bhattarai [et al.] // Cell Host Microbe. – 2018. – Vol. 23, N 6. – P. 775‒785.e5. https://doi.org/10.1016/j.chom.2018.05.004

24. Effect of zinc treatment on intestinal motility in experimentally induced diarrhea in rats / O. S. Adeniyi [et al.] // Niger J. Physiol. Sci. – 2014. – Vol. 29, N 1. – P. 11‒15.

25. Выбор дозы препарата для доклинического исследования: межвидовой перенос доз / Е. В. Шекунова [и др.] // Ведомости Науч. центра экспертизы средств мед. применения. Регулятор. исслед. и экспертиза лекарств. средств. – 2020. – Т. 10, № 1. – С. 19–28.

26. Neinast, M. Branched chain amino acids / M. Neinast, D. Murashige, Z. Arany // Annu. Rev. Physiol. – 2019. – Vol. 81. – P. 139‒164. https://doi.org/10.1146/annurev-physiol-020518-114455

27. Holeček, M. Branched-chain amino acids in health and disease: metabolism, alterations in blood plasma, and as supplements / M. Holeček // Nutr. Metab. – 2018. – Vol. 15. – Art. 33. https://doi.org/10.1186/s12986-018-0271-1


##reviewer.review.form##

Для цытавання:


Шейбак В.М., Павлюковец А.Ю., Дорошенко Е.М. Триптофан и цинк: влияние совместного введения на гомеостаз свободных аминокислот плазмы. Известия Национальной академии наук Беларуси. Серия медицинских наук. 2024;21(1):43-52. https://doi.org/10.29235/1814-6023-2024-21-1-43-52

For citation:


Sheybak V.M., Pavlyukovets A.Yu., Doroshenko E.M. Tryptophan and zinc: effect of co-administration on plasma free amino acid homeostasis. Proceedings of the National Academy of Sciences of Belarus, Medical series. 2024;21(1):43-52. (In Russ.) https://doi.org/10.29235/1814-6023-2024-21-1-43-52

Праглядаў: 944


Creative Commons License
Кантэнт даступны пад ліцэнзіяй Creative Commons Attribution 3.0 License.


ISSN 1814-6023 (Print)
ISSN 2524-2350 (Online)