Preview

Известия Национальной академии наук Беларуси. Серия медицинских наук

Пашыраны пошук

Комплекснае макраскапічнае, гісталагічнае і электронна-мікраскапічнае даследаванне загойвання паўнаслойнай скурнай раны ў лабараторных пацукоў

https://doi.org/10.29235/1814-6023-2022-19-3-278-289

Анатацыя

З дапамогай макра-, мікра- і ўльтрамікраскапічнага метадаў вывучаны асаблівасці загойвання паўнаслойнай скурнай раны ў лабараторных пацукоў. Высветлена, што падчас загойвання на паверхні раны ўтвараюцца дзве мяжы ‒ адна па краі дэрмы, другая па краі эпідэрміса. Паказана, што грануляцыйная тканка можа фарміравацца не толькі шляхам перабудовы фібрыну, але і за кошт рэарганізацыі падскурнай клятчаткі. Вылучана гіпотэза, што кантракцыя раны адбываецца не толькі праз сцягванне калагенавых фібрыл міяфібрабластамі, але і шляхам уцягвання фібрыл у цытаплазму дадзеных клетак з наступным разбурэннем. Звяртаецца ўвага на аднаўленне эластычнай праслойкі як істотнага кампанента скурнага рэгенерата. Тлумачацца прычыны з’яўлення прадольна выцягнутай формы і арыентацыі па сагітальнай лініі шнара, які пажыццёва застаецца на месцы былога пашкоджання скуры.

Аб аўтарах

А. Астроўскі
Інстытут біяхіміі біялагічна актыўных злучэнняў, НАН Беларусі
Беларусь


А. Бакуновіч
Інстытут біяхіміі біялагічна актыўных злучэнняў, НАН Беларусі
Беларусь


А. Астроўская
Гродзенскі дзяржаўны медыцынскі ўніверсітэт
Беларусь


Спіс літаратуры

1. Лечение ран : учеб.-метод. пособие / А. А. Завражнов [и др.]. – Краснодар : ГБОУ ВПО «Кубан. гос. мед. ун-т», 2016. – 29 с.

2. Velnar, T. The wound healing process: an overview of the cellular and molecular mechanisms / T. Velnar, T. Bailey, V. Smrkolj // J. Int. Med. Res. – 2009. – Vol. 37, N 5. – P. 1528–1542. https://doi.org/10.1177/147323000903700531

3. Cells from discarded dressings differentiate chronic from acute wounds in patients with Epidermolysis Bullosa / I. Fuentes [et al.] // Sci. Rep. – 2020. – Vol. 10, N 1. – Art. 15064. https://doi.org/10.1038/s41598-020-71794-1

4. Experimental models and methods for cutaneous wound healing assessment / D. S. Masson-Meyers [et al.] // Int. J. Exp. Pathol. – 2020. – Vol. 101, N 1‒2. – P. 21–37. https://doi.org/10.1111/iep.12346

5. Wound healing concepts in clinical practice of OMFS / S. Chhabra [et al.] // J. Maxillofac. Oral Surg. – 2017. – Vol. 16, N 4. – P. 403–423. https://doi.org/10.1007/s12663-016-0880-z

6. An overview of tissue types in pressure ulcers: a consensus panel recommendation / J. Black [et al.] // Ostomy/wound Management. – 2010. – Vol. 56, N 4. – P. 28–44.

7. Влияние ауто- и ксеногенных фибробластов и дермального эквивалента на содержание макрофагов в грануляционной ткани ишемизированной раны кожи на 12-е сутки регенеративного гистогенеза / Е. Ю. Шаповалова [и др.] // Мед. вестн. Север. Кавказа. – 2019. – Т. 14, № 1–2. – С. 255–260.

8. Novel fibrin-fibronectin matrix accelerates mice skin wound healing / C. P. Jara [et al.] // Bioactive Materials. – 2020. – Vol. 4, N 4. – P. 949–962. https://doi.org/10.1016/j.bioactmat.2020.06.015

9. Single-cell analysis reveals fibroblast heterogeneity and myeloid-derived adipocyte progenitors in murine skin wounds / C. F. Guerrero-Juarez [et al.] // Nat. Commun. – 2019. – Vol. 10, N 1. – Art. 650. https://doi.org/10.1038/s41467-018-08247-x

10. Andrade, Z. A. Interrelationship between adipocytes and fibroblasts during acute damage to the subcutaneous adipose tissue of rats: an ultrastructural study / Z. A. Andrade, J. de-Oliveira-Filho, A. L. M. Fernandes // Brazil. J. Med. Biol. Res. – 1998. – Vol. 31, N 5. – P. 659–664. https://doi.org/10.1590/s0100-879x1998000500009

11. Davidson, J. M. Animal models for wound repair / J. M. Davidson // Arch. Dermatol. Res. – 1998. – N 290, suppl. 1. – P. S1–S11. https://doi.org/10.1007/pl00007448

12. The dynamic anatomy and patterning of skin / R. Wong [et al.] // Exp. Dermatol. – 2016. – Vol. 25, N 2. – P. 92–98. https://doi.org/10.1111/exd.12832

13. Starcher, B. Multiple roles for elastic fibers in the skin / B. Starcher, R. L. Aycock, C. H. Hill // J. Histochem. Cytochem. – 2005. – Vol. 53, N 4. – P. 431–443. https://doi.org/10.1369/jhc.4A6484.2005

14. Выкарыстанне ўдасканаленай ахоўнай камеры для мадэлявання пашкоджання скуры ў лабараторных пацукоў [Электронны рэсурс] / А. А. Бакуновіч [і інш.]. ‒ Рэжым доступу : http://www.grsmu.by/files/file/science/konferencija/bakunovich_a_a.pdf. ‒ Дата доступу : 19.03.2021.

15. Бордаков, В. Н. Рана. Раневой процесс. Принципы лечения ран : учеб.-метод. пособие / В. Н. Бордаков. – Минск : БГМУ, 2014. – 31 с.

16. Regenerative potential of tonsil mesenchymal stem cells on surgical cutaneous defect / S. C. Shin [et al.] // Cell Death & Disease. – 2018. – Vol. 9, N 2. – P. 183. https://doi.org/10.1038/s41419-017-0248-4

17. Reynolds, E. S. The use of lead citrate at high pH as an electronopaque stain in electron microscopy / E. S. Reynolds // J. Cell. Biol. – 1963. – Vol. 17, N 1. – P. 208–212. https://doi.org/10.1083/jcb.17.1.208

18. Formation and degradation of lipid droplets in human adipocytes and the expression of aldehyde oxidase (AOX) / H. Heid [et al.] // Cell Tissue Res. – 2020. – Vol. 379, N 1. – P. 890–900. https://doi.org/10.1007/s00441-019-03152-1

19. Dermal adipocyte lipolysis and myofibroblast conversion are required for efficient skin repair / B. A. Shook [et al.] // Cell Stem Cell. – 2020. – Vol. 26, N 6. – P. 880–895. https://doi.org/10.1016/j.stem.2020.03.013

20. Van De Water, L. Mechanoregulation of the myofibroblast in wound contraction, scarring, and fibrosis: opportunities for new therapeutic intervention / L. Van De Water, S. Varney, J. J. Tomasek // Adv. Wound Care. – 2013. – Vol. 2, N 4. – P. 122–141. https://doi.org/10.1089/wound.2012.0393

21. Differentiation of myofibroblasts in wounds after topical use of metronidazole: an experimental study / L. C. T. Trindade [et al.] // Rev. Col. Brasil. Cir. – 2019. – Vol. 46, N 1. – P. 1–11. https://doi.org/10.1590/0100-6991e-20192015

22. Лиознер, Л. Д. Восстановление утраченных органов / Л. Д. Лиознер. – М. : Издательство АН СССР, 1962. – 140 с.

23. Comparative regenerative mechanisms across different mammalian tissues / S. E. Iismaa [et al.] // npj Regen Med. – 2018. – Vol. 3, N 6. – P. 1–20. https://doi.org/10.1038/s41536-018-0044-5

24. Rinkevich, B. The “stars and stripes” metaphor for animal regeneration-elucidating two fundamental strategies along a continuum / B. Rinkevich, Y. Rinkevich // Cells. – 2013. – Vol. 2, N 1. – P. 1–18. https://doi.org/10.3390/cells2010001

25. Non-invasive evaluation of skin tension lines with elastic waves / C. Deroy [et al.] // Skin Res. Technol. – 2017. – Vol. 23, N 3. – P. 326–335. https://doi.org/10.1111/srt.12339


##reviewer.review.form##

Для цытавання:


Астроўскі А.А., Бакуновіч А.А., Астроўская А.Б. Комплекснае макраскапічнае, гісталагічнае і электронна-мікраскапічнае даследаванне загойвання паўнаслойнай скурнай раны ў лабараторных пацукоў. Известия Национальной академии наук Беларуси. Серия медицинских наук. 2022;19(3):278-289. https://doi.org/10.29235/1814-6023-2022-19-3-278-289

For citation:


Astrowski A.A., Bakunovich A.А., Astrowskaja A.B. Complex macroscopic, histological, and electron microscopic examination of the healing of a full-thickness skin wound in laboratory rats. Proceedings of the National Academy of Sciences of Belarus, Medical series. 2022;19(3):278-289. (In Bel.) https://doi.org/10.29235/1814-6023-2022-19-3-278-289

Праглядаў: 327


Creative Commons License
Кантэнт даступны пад ліцэнзіяй Creative Commons Attribution 3.0 License.


ISSN 1814-6023 (Print)
ISSN 2524-2350 (Online)